พัฒนาการของคัพภะปลาบู่เหลือง Cryptocentrus cinctus (Herre, 1936) ในโรงเพาะฟัก
Embryonic Development of Yellow Prawn-Goby, Cryptocentrus cinctus (Herre, 1936) in the Hatchery
Keywords:
ปลาบู่เหลือง Cryptocentrus cinctus (Herre, 1936) , ระยะเวลาพัฒนาการ , ช่วงเวลาของการเกิดพัฒนาการของคัพภะ, yellow-prawn goby, Cryptocentrus cinctus (Herre, 1936) , stage of development , period ofembryonic of developmentAbstract
การทดลองครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาระยะและช่วงเวลาของการเกิดพัฒนาการของคัพภะปลาบู่เหลือง Cryptocentrus cinctus (Herre, 1936) ในโรงเพาะฟัก โดยทำการศึกษาไข่ปลาบู่เหลืองตั้งแต่ปฏิสนธิจนฟักตัวอ่อน พ่อแม่พันธุ์ปลาบู่เหลืองทั้งหมด 10 ตัว เพศเมีย 5 ตัว เพศผู้ 5 ตัว มีขนาดความยาวมาตรฐานเฉลี่ย 4.21±0.32 (±SD) เซนติเมตร ความยาวทั้งหมดเฉลี่ย 5.14±0.39 เซนติเมตร และมีน้ำหนักตัวทั้งหมดเฉลี่ย 1.44±0.22 กรัม ผลการศึกษาพบว่าไข่ของปลาบู่เหลืองเป็นไข่จมแบบเกาะติด (Adhesive demersal egg) มีปลายด้านหนึ่งเป็นกลุ่มของ adhesive filament แต่ละใบถูกยึดติดรวมกันด้วยเส้นใยเล็ก ๆ คล้ายพวงองุ่น ขนาดของไข่มีความยาวเฉลี่ย 1.66±0.02 มิลลิเมตร ความกว้างเฉลี่ย 0.55±0.00 มิลลิเมตร (n=10) ระยะเวลาพัฒนาการตั้งแต่ไข่ได้รับการปฏิสนธิจนฟักออกเป็นตัวอ่อน 107 ชั่วโมง 33 นาที ที่อุณหภูมิน้ำ 27-29 องศาเซลเซียส ความเค็ม 33-35 ส่วนในพันส่วน มีพัฒนาการคัพภะของไข่ 7 ระยะ ประกอบด้วย 1. ไซโกต (Zygotic) 2. คลีเวจ Cleavage 3. บลาสตูลา (Blastula) 4. แกสตูล่า (Gastrula) 5. การแบ่งส่วน (Segmentation) 6. ฟลาลิกูล่า (Pharyngula) และ 7. ระยะฟัก (Hatching out) และลูกปลาแรกฟักมีความยาวมาตรฐานเฉลี่ย 2.28±0.03 มิลลิเมตร และมีความยาวทั้งหมดเฉลี่ย 2.39±0.03 มิลลิเมตร (n=30) An experiment was conducted to investigate the stage and period of embryonic of development in yellow prawn-goby Cryptocentrus cinctus (Herre, 1936) in thehatchery. An average standard length of broodstock was21±0.32 (±SD) cm. average total length was 5.14±0.39 cm. and average weight was 1.44±0.22 gram (n =10, male 5: female 5) It was found that eggs were adhesive demersal eggs (the spawned eggs adhesive to substratum with adhesive egg membrane or filaments). Eggs average length was 1.66±0.02 mm. and average weight was 0.55±0 (n=10). Embryonic periods were 107 hrs.33 min. after fertilization at water temperature 27-29 ๐c and salinity 33-35 ppt. The embryonic development is divided into 7 stages including 1. Zygotic 2. Cleavage 3. Blastula 4. Gastrula 5. Segmentation 6. Pharyngula and 7. Hatching out. An average standard length of hatched larvae wasobserved average standard length 2.28±0.03 mm. and thetotal length was2.39±0.03 mm. (n=30)References
Arenzon A., Lemos C.A. & Bohrer M.B.C. (2002) The influence of temperature on the embryonic development of the annual fish Cynopoecilus melanotaenia (Cyprinodontiformes, Rivulidae). Brazilian Journal of Biology 62, 743–747.
Arakawa, T., Kanno, Y., Akiyama, N., Kitano, T., Nakatsuji, N., & Nakatsuji, T. (2009). Stages of Embryonic Development of the Ice Goby (Shiro-uo), Leucopsarion petersii. Zoological Science, 16, 761-773. doi:10.2108/zsj.16.761
Archambeault, S., Ng, E., Rapp, L., Cerino, D., Bourque, B., Solomon-Lane, Grober, M. S., Rhyne, A., Crow, K. (2016). Reproduction, larviculture and early development of the Bluebanded goby, Lythrypnus dalli, an emerging model organism for studies in evolutionary developmental biology and sexual plasticity. Aquaculture Research, 47(6), 1899-1916. doi:10.1111/are.12648
Capuli, E. E., & Valdestamon, R. R. (1991). Cryptocentrus cinctus (Herre, 1936) Yellow prawn-goby. Retrieved July 29, 2020, from http://www.fishbase.org/summary/7208.
Chana, T., Thanakit, K., Pratthana, K., & Nattawut, L., (2019). Trading data (Species composition, volume and value) of Gobiidae at marine ornamental shops in area of Jatujak Weekend Market, Bangkok Province. KHON KAEN AGR. J. 47 (SUPPL. 1). 1181-1186. (in Thai)
Charles, B. K., William, W. B., Seth, R. K., Bonnie, U., & Thomas, F. S. (1995). Stages of Embryonic Development of the Zebrafish. Developmental Dynamics, 203, 2553’2510.
Choosri. S., Jarunan, P., Sucha, M. & Wilaiwan, P. (2019). Embryonic development of Blueband goby, Valenciennea strigata under the laboratory conditions. KHON KAEN AGR. J. 47 (SUPPL. 1). 1140-1146. (in Thai)
Dey, V.K. (2016). The Global Trade in Ornamental Fish. Infofish International. www.infofish.org.52-55.
Friedlander, A. (2001). Essential Fish Habitat and the Effective Design of Marine Reserves: Application for Marine Ornamental Fishes. Aquarium Science and Conservation, 3, 135-150. doi:10.1023/A:1011390729192
Green, E. (2003). International trade in marine aquarium species: using the Global Marine Aquarium Database. In: Marine Ornamental Species: Collection, Culture, and Conservation.
Haemachatanorm, W. (1985). Larvea: Basic knowledge. Marine Science Department, Chulalongkorn University. 242 p. (in Thai)
Karthick, R., Aanand, P., Padmavathy, S., & Sampathkumar, J. S. (2019). Present and future market trends of Indian ornamental fish sector. International Journal of Fisheries and Aquatic Studies, 7(2), 06-15.
Kimmel C.B., Ballard W.W., Kimmel S.R., Ullmann B. & Schilling T.F. (1995) Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics 203, 253–310
Kucharczyk D., Luczynski M., Kujawa R. & Czerkies P. (1997). Effect of temperature on embryonic and larval development of bream (Abramis brama L.). Aquatic Science 59, 214–224
Marcelo, R., Pereira, S., Kleber, C. M.F., Ricardo, V. R. & Lui, A.S. (2010). Production of juvenile barber goby Elacatinus figaro in captivity: developing technology to reduce fishing pressure on an endangered species. Marine Biodiversity Records, 1- 7. # Marine Biological Association of the United Kingdom, 2010 doi:10.1017/S1755267210000412 ; Vol. 3; e57; 2010 Published online. 8 July, 2020.
Olivottoa I., Alessio, Z., Arianna, R., Beatrice, M., Matteo, A., & Oliana, C. (2005). Breeding, rearing and feeding studies in the cleaner goby Gobiosoma evelynae. Aquaculture, 250. 175-182.
Pedrazzani, S, A. (2014). Reproductive behavior, embryonic and early larval development of the red head goby, Elacatinus puncticulatus. Animal Reproduction Science, 145. 69-74.
Ruiz, J.M.C. (2012). Cryptocentrus cinctus. Practical experience in maintenance and reproduction. Retrieved July 29, 2020, from http:// aquaticnotes.com/content/pub/EN/ cryptocentrus. pdf.
Satam, S. B., Sawant, N. H., Ghughuskar, M. M., Sahastrabuddhe, V. D., Naik, V., Pagarkar, A. U., Hogale, N. D., Metar, S. Y., Shinde, K. M., Sadawarte, V. R., Sawant, A. N., Singh, H. P., Sawant, A., Patil, V. K., Rane, A.D., Haldankar, P. M & Bhattacharyya, T. (2018). Ornamental Fisheries: A new Avenue to Supplement Farm Income. (2581-3749), 193-197.
Schirone R.C. & Gross L. (1968) Effect of temperature on early embryological development of the zebra fish, Brachydanio rerio. Journal of Experimental Zoology 169,43–52.
Spirita, S. V., Ahila, A. J., (2015). Stages of Embryonic Development of the Zebrafish Danio rerio (Hamilton). European Journal of Biotechnology and Bioscience. Volume: 3, Issue: 6, 06-11.
Shei, M., Miranda Filho, K., Rodrigues, R., & Sampaio, L. (2011). Production of juvenile barber goby Elacatinus figaro in captivity: developing technology to reduce fishing pressure on an endangered species. Marine Biodiversity Records, 3. doi:10.1017/S1755267210000412.
Wabnitz, C., Michelle, T., Edmund, G., & Tries, R. (2003). From Ocean to Aquarium: The Global Trade in Marine Ornamental Species. Research Gate.
Wittenrich, L. M. (2007). The complete illustrated breeder’s guide to marine aquarium fishes. In T. F. H. Publications (Ed.), pp 304.
