กำลังการผลิตขั้นต้นของแพลงก์ตอนพืชต่างขนาดในห้องปฏิบัติการ

Primary Productivity of Two Phytoplankton Cell Sizes in Laboratory

Authors

  • เจริญลักษณ์ สุชาติพงษ์
  • สุนิดา ปานเพชร
  • สุธาพร บุญญเจตน์พงษ์
  • ไทยถาวร เลิศวิทยาประสิทธิ

Keywords:

กำลังการผลิตขั้นต้น , แพลงก์ตอนพืช , Chattonella; Isochrysis, primary productivity , phytoplankton

Abstract

งานวิจัยนี้ศึกษากำลังการผลิตขั้นต้นของแพลงก์ตอนพืชต่างขนาดในห้องปฏิบัติการ โดยแพลงก์ตอนพืชที่เลือกศึกษาเป็นแพลงก์ตอนพืชที่พบบริเวณปากแม่น้ำ ป่าชายเลน และทะเลชายฝั่ง ในอ่าวไทย คือ Chattonella subsalsa (ขนาดกว้าง 23.18±3.32 และยาว 30.35± 3.38 ไมโครเมตร) และ Isochrysis sp. (ขนาด 4.33± 0.77 ไมโครเมตร) เพื่อเป็นตัวแทนของไมโครแพลงก์ตอน และนาโนแพลงก์ตอน ตามลำดับ โดยการทดลองแบ่งเป็น 2 ส่วน คือ ภาวะเลี้ยงเดี่ยว ในอาหารสูตร T1 และภาวะเลี้ยงรวม ในอาหารสูตร T1 ความเข้มข้น 100% 50% และ 1% ผลการศึกษาพบว่า (1) จำนวนเซลล์ ขนาดเซลล์กำลังการผลิตขั้นต้น ปริมาณคลอโรฟิลล์เอ และช่วงชีวิต แปรผันตามความเข้มข้นของสารอาหาร (2) ภาวะเลี้ยงรวม ที่ความเข้มข้น 100% T1 นาโนแพลงก์ตอนพืชมีกำลังการผลิตขั้นต้นสูงสุด สูงขึ้น 47.27% เมื่อเทียบกับภาวะเลี้ยงเดี่ยว เนื่องจากมีการปรับลดจำนวนเซลล์ 42.58% และลดขนาดเซลล์ 3% แต่เพิ่มปริมาณคลอโรฟิลล์เอถึง 1291% นอกจากนี้ นาโนแพลงก์ตอนพืชยังมีการปรับระยะเวลาที่ค่าประสิทธิภาพกำลังการผลิตขั้นต้นต่อหน่วยคลอโรฟิลล์เอ (PP/Chl a) สูง ให้ยาวขึ้น คือ ในช่วง 5 วันแรก จากเดิมที่มีค่าสูงเฉพาะวันที่ 3 ในภาวะเลี้ยงเดี่ยว และปรับปริมาณคลอโรฟิลล์เอต่อเซลล์ (Chl a /cell) ให้สูงขึ้นใน 2 ช่วงเวลา คือ ในช่วง 3 วันแรก และช่วงที่ความหนาแน่นเซลล์สูง ส่งผลให้นาโนแพลงก์ตอนพืชสามารถปรับตัวให้ดำรงชีวิตอยู่ได้ ทั้งในบริเวณที่สารอาหารมีปริมาณสูง (100% และ 50% T1) และต่ำ (1% T1) และ (3) ในขณะที่ไมโครแพลงก์ตอนพืชสามารถดำรงชีวิตได้ดีในบริเวณที่สารอาหารมีปริมาณสูง (100% และ 50% T1) แต่ต้องปรับตัวอย่างมาก เมื่อสารอาหารมีปริมาณต่ำ (1% T1) โดยปรับปริมาณ Chl a/cell ให้สูงขึ้นตลอดช่วงเวลาการดำรงชีวิต เพราะค่า PP/Chl a อยู่ในระดับต่ำกว่านาโนแพลงก์ตอนพืชมาก จึงส่งผลต่อการดำรงชีวิต และกำลังการผลิตขั้นต้นที่ต่ำ  This research aimed to study the primary productivity of two phytoplankton cell sizes in laboratory. The chosen phytoplanktonfor this study werefound at river mouths, mangroves and seashores of the Gulf of Thailand. They were the phytoplankton Chattonella subsalsa (23.18 x 30.3 µm) and Isochrysis sp. (4.33 µm), represented as microplankton and nanoplankton, respectively. The experiment was divided into two parts; pure and mixed phytoplankton cultures were grown in the T1 medium and the 100%, 50% and 1% T1 medium, respectively. The results showed that cell number, cell size, primary productivity, chlorophyll a content and lifetime had direct variation to nutrient concentation. Comparing mixed cultures to pure culture, at 100% T1 the primary productivity of nanophytoplankton was increased 47.27% since the nanophytoplankton had decreased cell number (42.58%) and cell size (3%) but increased chlorophyll a content (1291%). Furthermore, they adapted themselves by extending the period of high PP/Chl a value from one day (day 3; pure culture) to the first five days (day 1-5; mixed culture) and increasing the Chl a/cell value in two periods, the first three day and the day that gave high cell density. Therefore, the nanophytoplankton were able to live in both area of high and low nutrient while the microphytoplankton lived well in the high-nutrient area and had difficulty to live in the low-nutrient area (1% T1). They adapted themselves by increasing the Chl a/cell value throughout their lifetime because their PP/Chl a value was low, comparing to it of nanophytoplankton, even though their primary productivity was low.

References

Alkhamis, Y. and Qin, J. G. (2013). Cultivation of Isochrysis galbana in phototrophic, heterotrophic, and mixotrophic conditions. BioMed Research International, 2013(983465), 1-9.

Ardon, M., Zeglin, L. H., Utz, R. M., Cooper, S. D., Dodds, W. K., Bixby, R. J., Burdett, A. S., Shah, J. F., Griffiths, N. A., Harms, T. K., Johnson, S. L., Jones, J. B., Kominoski, J. S., McDowell, W. H., Rosemond, A. D., Trentman, M. T., Horn, D. V. and Ward, A. (2021). Experimental nitrogen and phosphorus enrichment stimulates multiple trophic levels of algal and detrital-based food webs: a global meta-analysis from streams and rivers. Biological Reviews, 96, 692-715.

Boonkwan, S. (2013). Seasonal variations of phytoplankton and primary production in the Inner Gulf of Thailand. In MSc Thesis. (pp. 1-96). Chonburi: Burapha University. (in Thai)

Borsheim, K. Y., Vadstein, O., Myklestad, S. M., Reinertsen, H., Kirkvold, S. and Olsen, Y. (2005). Photosynthetic algal production, accumulation and release of phytoplankton storage carbohydrates and bacterial production in a gradient in daily nutrient supply. Journal of Plankton Research, 27, 743-755.

Cho, B. C. and Azam, F. (1990). Biogeochemical significance of bacterial biomass in the ocean's euphotic zone. Marine Ecology Progress Series,63, 253-259.

Cullen, J. J. (2001). Primary Production Methods. Retrieved January 13, 2021, from doi:10.1006/rwos.2001.0203

Ducklow, H. W. and Carlson, C. A. (1992). Oceanic bacterial production. In Marshall, K. C. (1st Eds.). Advances in Microbial Ecology. (pp. 113-181). New York: Plenum Press.

Hansen, H. P. and Koroleff, F. (1999). Determination of nutrients. In Grasshoff, K., Kremling, K. and Ehrhardt M. (3rd Eds.). Methods of Seawater Analysis. (pp. 159-228). Weinheim: Wiley-VCH Verlag GmbH.

Iriarte, A. and Purdie, D. A. (1994). Size distribution of chlorophyll a biomass and primary production in a temperate estuary (Southampton Water): the contribution of photosynthetic picoplankton. Marine Ecology Progress Series, 115, 283-297.

Jaroensuk, P. (2018). Primary productivity of size-fractionated phytoplankton in the Inner Gulf of Thailand. In MSc Thesis. (pp. 1-92). Bangkok: Chulalongkorn University. (in Thai)

Lursinsap, A., Chaiyakham, K. and Sirimontaporn, P. (1986). Primary production and the potential of fish production in Songkra lake. In Proceeding Kasetsart University Seminar. (pp. 156-163). Bangkok: Kasetsart University. (in Thai) Millero, F. J. (2006). Chemical Oceanography. Boca Raton: CRC Press.

Musikasung, W., Yusoff, M. S. B.and Razak, S. B. A. (1999). Primary production determination in the South China Sea, area I: Gulf of Thailand and east coast of Peninsular Malaysia. In Proceeding of the First Technical Seminar on Marine Fishery Resources Survey in the South China Sea, Area I: Gulf of Thailand and Peninsular Malaysia, 24-26 November 1997, Bangkok, Thailand. (pp. 135-146). Samutprakan: Southeast Asian Fisheries Development Center.

Nielsen, S. S. (2010). Food Analysis Laboratory Manual. New York: Springer.

Ogata, T., Kodama, M. and Ishimaru, T. (1987). Toxin production in the dinoflagellate Protogonyaulax tamarensis. Toxicon, 25(9), 923-928.

Panpet, S. (2019). Comparison of primary productivity in two phytoplankton cell sizes. In BSc Senior Project. (pp. 1-43). Bangkok: Chulalongkorn University. (in Thai)

Pholpunthin, P. (1998). Cultivation of some Phytoplankton that Caused Red Tide. Retrieved January 3, 2021, from https://kb.psu.ac.th/psukb/handle/2553/3914 (in Thai)

Phromthong, I. (1999). Dynamics and diversity of phytoplankton in Tha Chin estuary, Samut Sakhon province. In MSc Thesis. (pp. 1-141). Bangkok: Chulalongkorn University. (in Thai)

Strickland, J. D. H. and Parsons, T. R. (1972). A Practical Handbook of Seawater Analysis. Ottawa: The Alger Press Ltd.

Wetzel, R. G. and Likens, G. E. (2000). Limnological Analyses. New York: Springer.

Williams, P. J. leB. (1993). On the definition of plankton production terms. ICES mar. Sci. Symp.,197, 9-19.

Wongrat, L. (1996) Phytoplankton. Bangkok: Kasetsart University Press. (in Thai)

Zhang, Y., Yin, Y., Wang, M. and Liu, X. (2012). Effect of phytoplankton community composition and cell size on absorption properties in eutrophic shallow lakes: field and experimental evidence. Optics Express, 20, 11882-11898.

Downloads

Published

2022-09-29