การชักนำให้เกิดยอดและการเพิ่มปริมาณยอดของหน่อไม้ฝรั่งในสภาพหลอดทดลอง

In vitro Shoot Induction and Shoot Multiplication of Asparagus (Asparagus officinalis)

Authors

  • ศิรศาธิญากร บรรหาร
  • สุทธิกานต์ กองทอง

Keywords:

การชักนำให้เกิดยอดและราก , สารควบคุมการเจริญเติบโต , หน่อไม้ฝรั่ง, shoot and root induction , plant growth regulator , Asparagus officinalis

Abstract

จากการชักนำให้เกิดยอดและการเพิ่มปริมาณยอดของหน่อไม้ฝรั่ง (Asparagus officinalis) ในสภาพหลอดทดลอง โดยนำชิ้นส่วนตาข้างขนาด 1.5±0.2 เซนติเมตร มาเพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งสูตร Murashige and Skoog (MS, 1962) ร่วมกับการเติมสารควบคุมการเจริญเติบโตในกลุ่มไซโตไคนินคือ 6-Benzylaminopurine (BAP) ที่ระดับความเข้มข้น 0,0.5, 1.0, 1.5 และ 2.0 มิลลิกรัม/ลิตร เป็นเวลา 4 สัปดาห์พบว่าอาหารสูตร MS ที่เติม BAP ในทุกระดับความเข้มข้น สามารถชักนำให้เกิดยอดได้ นอกจากนี้ยังมีชิ้นส่วนตาข้างที่สามารถพัฒนาไปเป็นแคลลัส และจะเห็นได้ว่าอาหารสูตร MS ที่เติม BAP 0.5 มิลลิกรัม/ลิตร มีความยาวยอดมากที่สุดและแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติจากชุดการทดลองอื่นๆ จากนั้นนำไปเพิ่มปริมาณยอดให้มากขึ้น โดยนำชิ้นส่วนยอดมาเพาะเลี้ยงบนอาหารสูตร MS ที่เติม BAP หรือ Kinetin เพียงอย่างเดียวหรือเติม เติมร่วมกับ 1-Naphthylacetic acid (NAA) ที่ระดับความเข้มข้น 0.1, 0.5 และ 1.0 มิลลิกรัม/ ลิตร พบว่าอาหารสูตร MS ที่เติม BAP 0.5 มิลลิกรัม/ลิตร และอาหารสูตร MS ที่เติม Kinetin 1.0 มิลลิกรัม/ลิตร หรือการเติม BAP 0.5 มิลลิกรัม/ลิตร ร่วมกับ NAA 0.1 มิลลิกรัม/ลิตร สามารถเพิ่มจำนวนยอดได้มากขึ้น สำหรับการชักนำให้เกิดราก โดยนำชิ้นส่วนยอดไปเพาะเลี้ยงบนอาหารสูตร MS ที่เติมสารควบคุมการเจริญเติบโตในกลุ่มออกซิน ได้ แก่ NAA, IAA และ IBA ในระดับความเข้มข้นที่แตกต่างกัน เป็นระยะเวลา 8 สัปดาห์จะเห็นได้ว่า อาหารสูตร MS ที่เติม IBA 1.0 มิลลิกรัม/ลิตร เป็นสูตรอาหารที่สามารถ ชักนำให้เกิดรากได้ ในขณะที่ชุดการทดลองอื่น ๆ ไม่มีการสร้างรากเกิดขึ้น  From shoot induction and shoot multiplication of Asparagus (Asparagus officinalis) in vitro was launched by cultivating 1.5±0.2 cm lateral bud on Murashige and Skoog (MS, 1962) media with the addition of plant growth regulators in cytokinin group i.e. BAP at 0, 0.5, 1.0, 1.5 and 2.0 mg/L. After culturing for 4 weeks, it was found that MS media with BAP in all concentration could induce shoot as well. In addition, some lateral bud explants could be developed into callus. Obviously, MS media with 0.5 mg/L BAP had the highest shoot length and statistically different from other experiments. After that, shoot tip explants were obtained from aseptic seedlings culturing on MS media supplemented with BAP or kinetin alone or together with NAA at 0.1, 0.5, 1.0 mg/L. The result showed that MS medium supplemented with 0.5 mg/L BAP or 1.0 mg/L kinetin alone or addition of 0.5 mg/L BAP with 0.1 mg/L NAA could induce number of shoot well. For root induction, shoot tip explants were cultured on MS media supplemented with plant growth regulators in auxin group including NAA, IAA and IBA at different concentration for 8 weeks. The result revealed that MS media supplemented with 1.0 mg/L IBA was more effective in root induction of Asparagus while other experimental, no root formation.

References

Abu-Romman, M.S., Al-Hadid, A.K., & Arabiyyat, R.A. (2015). Kinetin Is the Most Effective Cytokinin on Shoot Multiplication from Cucumber. Journal of Agricultural Science, 7(10), 159–165.

Anis, M., Faisal, M. & Singh, S.K. (2003). Micropropagation of Mulberry (Morus alba) through in vitro culture of shoot tip and nodal explants. Plant Tissue Culture,13, 47–51.

Borjian, L. & Arak, H. (2013). A study on the effect of different concentration of plant hormones (BAP, NAA, 2, 4-D and Kinetin) on callus induction in Brassica napus. Intl. Res. J. Appl. Basic. Sci,5, 519-521.

Bousserouel, S., Grandois, J., Gosse, F., Werner, D., Barth, S.W., Marchioni, E., Marescaux, J. & Raul, F.A. (2013). Methanolic extract of white Asparagus shoots activates trail apoptotic death pathway in human cancer cells and inhibits colon carcinogenesis in a preclinical model. Int. J. of Oncology, 43(2), 394–404.

Chamswarng, C. (2011). Kasetsart leads Thailand. Kasetsart University Kasetsart University Research and Development Institute. Department of Agriculture Extension. (2004). Agricultural Knowledge Base.

Fonnesbech M., Fonnesbech A., & Bredmose N. (1977). Growth and Development of Asparagus plumosus Shoot Tips in vitro. Acta Hortic, 78, 287-288.

Huang, X. and Kong, L. (2006). Steroidal saponins from roots of Asparagus officinalis. Steroids, 71(2), 171– 176.

Inkaew W., & Sotthikul J. (2012). Influence of BA and TDZ on Chompoophukha’s propagation under sterile conditions. Chiang Mai: Department of Horticulture, Faculty of Agriculture. Chiang Mai University.

Jang, D.S., Cuendet, M., Fong, H.H., Pezzuto, J.M. & Kinghorn, A.D. (2004). Constituents of Asparagus officinalis evaluated for inhibitory activity against cyclooxygenase-2. J. Agric. Food Chem, 52, 2218–2222.

Kanjanapisut, K. (1987). Asparagus. Bangkok : Textbook Production Center for Rural Areas.

Koda Y., & Okazawa Y. (1980). Cytokinin production by Asparagus shoot apex cultured in vitro. Physiologia Plantarum, 49(2),193-197.

Makcayathorn M., Tantiwiwat S., & Na Nakorn M. (2012). Effect of BA on shoot multiplication and IBA on root induction of Butea monosperma (Lam.) Taub. In Proceeeding 48th Kasetsart University Academic Conference. (pp. 31-38). Bangkok: Kasetsart University.

Pant K. K. & Joshi S. D. (2018). Comparative Study of In Vitro Root and Shoot Proliferation from The Node Explants of Asparagus racemosus Willd. J. Inst. Agric. Anim. Sci., 35,121-125.

Paudel N., Aryal M. R., & Puri H.P. (2018). Effect of hormone for in vitro propagation of Asparagus racemosus Wild. Current Life Sciences, 4(4),53-61.

Rasad, F. M., Hasbullah, N. A., Azis, N. A., Daud, N. F. & Lassim, M.M. (2019). Micropropagation of Asparagus officinalisL. (Garden Asparagus) In Vitro. International Journal of Life Sciences Research, 7(3), 123-129.

Rojanawong T. (2006). Tissue culture and in vitro flowering induction of Phalaenopsis Hybrid (Phalaenopsis Silky Moon). Master's thesis. Silpakorn University.

Sarabi B., & Almasi, K. (2010). Indirect Organogenesis is Useful for Propagation of Iranian Edible Wild Asparagus (Asparagus officinalisL.). Asian Journal of Agricultural Sciences, 2(2),47-50.

Sargsyan, E., Vardanyan, A., Parsaeimehr, A. & Bekyan, A. (2015). Elaboration of Asparagus officinalisL. by in vitro and hydroponic combined method. American Journal of Microbiology and Biotechnology, 2(6), 81–86.

Sharan M., Nene C., & Sharon M. (2011). Regeneration of Asparagus racemosus by shoot apex and nodal explants. Asian J. Plant Sci. Res, 1(2), 49-56.

Stajner, N. (2013). Micropropagation of Asparagus by in vitro shoot culture. Methods in Molecular Biology, 11013 ,341-351.

Sujatha, M. & Reddy, T.P. (1998). Differential cytokinin effects on the stimulation of in vitroshoot proliferation from meristematic explants of castor. Plant Cell Reports ,17(6-7), 561–566.

Supinrach S., & Supinrach I. (2014). Effects of IBA and NAA on Rooting for the Orchid Plantlet Rhynchostylis gigantea(Lindl.) Ridl. ‘Cartoon’. Thai Science and Technology Journal, 22(4), 507–514.

Taiz, L. & Zeiger, E. (2002). Plant Physiology. California: The Benjamin/Cummings Publishing Company, Inc.

Thakur J., Dwivedi M.D., Sourabh P., Uniyal P.L., & Pandey A.K. Z. (2016). Genetic homogeneity revealed using SCoT, ISSR and RAPD markers in micropropagated Pittosporum eriocarpum Royle an endemic and endangered medicinal plant. PLoS ONE, 11(7), e0159050.

Techapinyawat, S. (2001). Plant Physiology. Bangkok: Kasetsart University.

Tongumpai, P. (2014). Plant hormones and synthesis of utilization guidelines in Thailand. Bangkok: Dynamic Printing.

Uthaimongkol, N. (2016). Phytosanitary measures for the exportation of plant commodities. Bangkok: Department of Agriculture.

Downloads

Published

2023-03-10